Efecto de Saccharomyces cerevisiae en el desempeño de crecimiento y parámetros hematológicos en un cultivo comercial de tilapia
DOI:
https://doi.org/10.19136/ta.a2n1.5735Palabras clave:
Probiótico comercial, levadura, tilapia, ciclo de cultivo.Resumen
En México, la actividad piscícola avanza hacia la tendencia de sustentabilidad, propiciando que la producción y los productos obtenidos incrementen su calidad y cantidad, disminuyendo el impacto ambiental. El objetivo del presente estudio fue evaluar el efecto de Saccharomyces cerevisiae (probiótico comercial Blue Booster®) a través de dos tratamientos bajo un diseño completamente al azar, fueron sembradas 36 crías/m3 en estanques de geomembrana de 69 m3, a las cuales se les suministró durante 150 días la levadura del género Saccharomyces cerevisiae en concentración de 1x109 UFC mL-1 y un tratamiento Control (TC) sin la adición de la levadura. Se determinaron las variables de crecimiento y hematológicas en los peces, y los parámetros de calidad en el agua. La calidad del agua se mantuvo dentro de los rangos considerados normales para la zootecnia de la especie, mostrando que el tratamiento con Blue Booster® (BB) tuvo mejor desempeño del crecimiento y mejor calidad de agua. Los peces tratados con la levadura mostraron un peso promedio de 499.0 g (± 59.6), con una longitud promedio de 26.1cm (± 1.36), siendo significativamente diferente del tratamiento Control (p< 0.05). Se observó que el porcentaje de hematocritos fue mayor para el tratamiento BB con un 44.3%, al igual que la supervivencia con un 94.0%. Los resultados mostraron que con la aplicación de esta tecnología probiótica se mantiene en mejores condiciones óptimas la calidad del agua y se logran mejorar los parámetros productivos, además se logró reducir la frecuencia de recambio de agua en los estanques de cultivo que es un beneficio directo para el productor.
Referencias
Albuquerque DM, Marengo ni NG, Mahl I, Moura MC de, Rodríguez-Rodríguez MDP, Ribeiro RP (2014) Bacillus em dietas para alevinos de tilápia do nilo, variedade Gift. Revista Bioscience 31(2).https://doi.org/10.14393/BJ-v31n2a2015-22506.
Alcántar J, Santos C, Moreno R, Antonio C. (2014). Manual para la producción de supermachos de tilapia del Nilo (Oreochromis niloticus). UNPA-PIFI, Oaxaca. México, 81.
APROMAR (2020) Asociación Empresarial de Productores de Cultivos Marinos. La acuicultura en España. http://www.apromar.es/content/informes-anuales.
Arsène MMJ, Davares AKL, Viktorovna PI, Andreevna SL, Sarra S, Khelifi I, Sergueïevna DM (2022) The public health issue of antibiotic residues in food and feed: Causes, consequences, and potential solutions. Veterinary World 15(3): 662-671. doi: 10.14202/vetworld.2022.662-671.
Asain HA, Fernández DB, Reta MJL, Suárez SCA (2011) Manual de acuacultura para la producción de mojarra tilapia (Oreochromis spp). Colegio de Postgraduados. Montecillos, Texcoco, Estado de México.
Baloch AR, Zhang XY, Schade R. IgY. (2015). Technology in aquaculture a review. Reviews in Aquaculture 7(3):153-160. doi:10.1111/raq.12059
Bermúdez M, Lucas A, Marcillo G, Vélez-Chica E, Cruz-Quintana J, Mesias Y, Vásconez A, Espinoza-Vera Y, Piaguage MM, Santana-Piñeros EA (2020) Effect of two commercial probiotics on weight gain, hematological parameters and intestinal histology in the Pacific fat sleeper Dormitator latifrons. Aquatechnica 23-30.
Bondad-Reantaso MG, MacKinnon B, Karunasagar I, Fridman S, Alday-Sanz V, Brun E, Le Groumellec M, Li A, Surachetpong W, Karunasagar I, Hao B, Dall'Occo A, Urbani R, Caputo A (2023) Revisión de alternativas al uso de antibióticos en acuicultura Reviews in Aquaculture 15(4): 1421-1451._doi:10.1111/raq.12786
Cano-Lozano JA, Díaz LMV, Bolívar JFM, Hume ME Pardo RYR (2022) Probióticos en cultivo de tilapia (Oreochromis niloticus): condiciones potenciales de cultivo de probióticos Lactococcus lactis. Revista de Biociencia y Bioingeniería 133 (3), 187-194.
Castañeda Guillot, C. (2018). Probióticos, puesta al día: an update. Revista cubana de pediatría, 90(2), 286–298. http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid= S0034-75312018000200009
Coreas-Madrid, A., Gutiérrez-Salguero, J., Rodríguez-Urrutia, E., & Flores-Tensos, J. (2022). Evaluación de diferentes densidades de siembra de tilapia (Oreochromis niloticus) en estanques artesanales de agua dulce en San Luis Talpa, La Paz, El Salvador. Revista Agrociencia, 5 (21), 16–23. https://doi.org/10.5281/zenodo.10602311
FAO (2020) Departamento de Pesca y Acuicultura de la FAO “El estado mundial de la pesca y la acuacultura 2018”. Roma, Italia.
Goh JX, Tan LT, Law JW, Ser HL, Khaw KY (2022) Harnessing the potentialities of probiotics, prebiotics, symbiotics, paraprobiotics, and postbiotics for shrimp farming. Reviews Aquaculture 14(3):1-80. doi:10.1111/raq.12659
González Salas, R, Vidal del Río MM, Pimienta-Concepción I (2021) Uso intensivo de antibióticos profilácticos en la acuicultura: un problema creciente para la salud humana y animal. Universidad y Sociedad 13(S2): 204-210. Recuperado a partir de https://rus.ucf.edu.cu/index.php/rus/article/view/2304
González C, Mejía D, JB (2012) Manual de Procedimientos de Producción de Tilapia, Impresos Múltiples, Washington D.C., Estados Unidos.
González R, Romero O, Valdivié M (2010) Evaluación de la calidad del agua y su influencia en el cultivo de la tilapia. Recuperado de http://www.panoramaacuicola.com/articulos_y_entrevistas/2009/03/20/evaluacion_de_la_calidad_del_agua_y_su_influencia_en_el_cultivo_de_la_tilapia.
Gutiérrez-R LA, David RCA, Montoya COI, Betancur GE (2016) Efecto de la inclusión en la dieta de probióticos microencapsulados sobre algunos parámetros zootécnicos en alevinos de tilapia roja (Oreochromis sp.). Revista de Salud Animal 38(2): 112-119. Recuperado en 03 de noviembre de 2023, de http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0253-570X2016000200007&lng=es&tlng=es
Hassaan MS, Mahmoud SA, Jarmolowicz S, El-Haroun ER, Mohammady EY, Davies SJ. (2018) Effects of dietary baker’s yeast extract on the growth, blood indices and histology of Nile tilapia (Oreochromis niloticus L) fingerlings. Aquaculture Nutrition 24: 1709-1717. doi: 10.1111/anu.12805
Javaheri S, Shore NS, Rose B, Kazemi H (1982) Compensatory hypoventilation in metabolic alkalosis. CHEST 81(3):296-301
Javahery S, Nekoubin H, Moradlu AH (2012) Effect of anaesthesia with clove oil in fish. Fish physiology and biochemistry, 38, 1545-1552.
Mantilla CHL, Vellojín FJ, García PD, Pertúz BV (2016) Desempeño del crecimiento y sobrevivencia de larvas de Oreochromis ssp. utilizando un probiótico en el alimento. Revista Colombiana de Biotecnología XVIII (1):90-94.
Meyer D (2004) Introducción a la acuicultura. Honduras: Zamorano. 144 p.
Molina A (2019) Probióticos y su mecanismo de acción en alimentación animal. Agronomía mesoamericana: órgano divulgativo del PCCMCA, Programa Cooperativo Centroamericano de Mejoramiento de Cultivos y Animales, 601–611. https://doi.org/10.15517/am.v30i2.34432
Mugwanya M, Dawood MAO, Kimera F et al. (2022) Actualización del papel de los probióticos, prebióticos y simbióticos para la acuicultura de tilapia como candidatos principales para la sostenibilidad alimentaria: una revisión. Probióticos y Antimicrobianos.Prot.14:130-157. https://doi.org/10.1007/s12602-021-09852-x
Pandit NP, Nakamura M (2010) Effect of high temperature on survival, growth and feed conversion ratio of Nile tilapia, Oreochromis niloticus. Our Nature 8(1).
Parisse G (2018) El acuario tropical de agua dulce. Parkstone International.
Pineda S HR, Palacio MRA, Londoño FLF (2020) Efecto de Saccharomyses cereviseae en la salud digestiva de la poslarva de tilapia roja Oreochromis sp. Revista De Investigaciones Veterinarias Del Perú, 31(2) e17935. https://doi.org/10.15381/rivep.v31i2.17935
Rawling M.D., Merrifield D.L., Davies S.J. (2009). Preliminary assessment of dietary supplementation of Sangrovit® on red tilapia (Oreochromis niloticus) growth performance and health. Aquaculture, 294: 118–122
Ran C, Huang L, Liu Z, Xu L, Yang Y, Tacon P, et al. (2015) A Comparison of the Beneficial Effects of Live and Heat-Inactivated Baker’s Yeast on Nile Tilapia: Suggestions on the Role and Function of the Secretory Metabolites Released from the Yeast. PLoS ONE 10(12): e0145448. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0145448
Reyes-Becerril M, Tovar-Ramírez D, Ascencio-Valle F, Civera-Cerecedo R, Gracia-López V, Barbosa-Solomieu V, et al. (2011) Effects of dietary supplementation with probiotic live yeast Debaryomyces hansenii on the immune and antioxidant systems of leopard grouper Mycteroperca rosacea infected with Aeromonas hydrophila. Aquaculture Research 42:1676–1686.
Ringo E. Olsen RE, Gifstad TØ, Dalmo RA, Amlund H, Hemre GI, Bakke AM (2010) Prebiotics in aquaculture: a review. Aquaculture Nutrition 16(2): 117- 136.
Senok AC, Ismaeel AY, Botta GA (2005) Probióticos: hechos y mitos. Clinical Microbiology and Infection.
Silva VV, Salomão RAS, Mareco EA, Dal Pai M, Santos VB (2021) El aditivo probiótico afecta el crecimiento muscular de la tilapia del Nilo (Oreochromis niloticus). Investigación en acuicultura 52: 2061-2069. https://doi.org/10.1111/are.15057
Torrecillas S, Montero D, Izquierdo M (2014) Improved health and growth of fish fed mannan oligosaccharides: potential mode of action. Fish Shellfish Immunology 36(2): 525-544.
Umu ÖC, Rudi, Diep DB (2017) Modulación del microbiota intestinal por fibras prebióticas y bacteriocinas. Microbial Ecology Health and Disease 24p.
Wetzel RG (2001) Limnology. Lake and River Ecosystems, Third Edition Academic Press, USA, 1006 p.
Yu Y, Zhang Z., Zhao F., Liu H., Yu L, Zha J, Wang G. (2019) Probiotic potential of Bacillus velezensis JW: antimicrobial activity against fish pathogenic bacteria and immune enhancement effects on Carassius auratus. Fish Shellfish Inmunology 78: 322-330. DOI:10.1016/j.fsi.2018.04.055.
Zar J (2010) Biostatistical Analysis (5th ed. pp:994) Englewood Cliff, NJ: Prentice Hall.
Descargas
Publicado
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2024 Autores & UJAT
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0.
